Федеральное государственное бюджетное учреждение науки
Институт теоретической и экспериментальной биофизики
Российской академии наук
en ИТЭБ (ru)
Фадеев Роман Сергеевич
Заведующий лабораторией
Фадеев Роман Сергеевич
к.б.н.
(4967) 73-94-52
(4967) 73-93-57

Лаборатория фармакологической регуляции клеточной резистентности ИТЭБ РАН создана в 2014 году в рамках реализации гранта Правительства Российской Федерации «Разработка препаратов адресного воздействия на митохондриальные поры и каналы для лечения заболеваний сердца, печени и терапии рака» (договор № 14.Z50.31.0028) на основании Постановления Правительства Российской Федерации от 9 апреля 2010 г. № 220 «О мерах по привлечению ведущих ученых в российские образовательные учреждения высшего профессионального образования, научные учреждения государственных академий наук и государственные научные центры Российской Федерации».

Основные направления

  • исследование роли митохондрий в механизмах кардио- и энцефалопатий;
  • исследование регуляции активности митохондриальной поры mPTP в физиологических и патологических условиях;
  • исследование механизмов лекарственной устойчивости опухолевых клеток, опосредованной условиями микроокружения;
  • исследование механизмов устойчивости опухолевых клеток к противоопухолевому иммунитету и иммунотерапевтическим препаратам;
  • разработка in vitro и ex vivo моделей для подбора персонифицированной терапии злокачественных новообразований.

Методы, используемые в работе

  • Культивирование клеток и тканей человека in vitro и ex vivo;
  • Выделение и анализ клеточных органелл;
  • Конфокальная микроскопия;
  • Прижизненная флуоресцентная микроскопия;
  • Высокопроизводительный анализ биологически активных соединений in vitro и ex vivo;
  • Высокосодержательный анализ биологически активных соединений in vitro и ex vivo;
  • Иммунохимические методы анализа тканей, клеток и субклеточных фракций;
  • Цитохимические и гистохимические методы анализа;
  • Проточная цитометрия;
  • Мультиплексный анализ клеточной секреции;
  • Работа с мелкими лабораторными животными.
2018
  1. DeHart D.N., Lemasters J.J., Maldonado E.N. Erastin-Like Anti-Warburg Agents Prevent Mitochondrial Depolarization Induced by Free Tubulin and Decrease Lactate Formation in Cancer Cells. SLAS Discov. 2018; 23(1): 23-33. IF=2.355
  2. DeHart D.N., Fang D., Heslop K., Li L., Lemasters J.J., Maldonado E.N. Opening of voltage dependent anion channels promotes reactive oxygen species generation, mitochondrial dysfunction and cell death in cancer cells. Biochem Pharmacol. 2018; 148: 155-162. IF=4.235
  3. Odinokova I., Baburina Y., Kruglov A., Fadeeva I., Zvyagina A., Sotnikova L., Akatov V., Krestinina O. Effect of Melatonin on Rat Heart Mitochondria in Acute Heart Failure in Aged Rats Int. J. Mol. Sci., 2018, 19(6), 1555. IF=3.687
  4. Kharechkina E.S., Nikiforova A.B., Kruglov A.G. Pyridine nucleotides regulate the superoxide anion flash upon permeabilization of mitochondrial membranes: An MCLA-based study. Free Radic Biol Med. 2018; 124: 473-483. IF=6.02
  5. Emelyanova L., Preston C., Gupta A., Viqar M., Negmadjanov U., Edwards S., Kraft K., Devana K., Holmuhamedov E., O'Hair D., Tajik A.J., Jahangir A. Effect of Aging on Mitochondrial Energetics in the Human Atria. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 2018; 73(5): 608-616. IF=4.902
  6. Rizvi F., Siddiqui R., DeFranco A., Homar P., Emelyanova L., Holmuhamedov E., Ross G2, Tajik A.J., Jahangir A. Simvastatin reduces TGF-β1-induced SMAD2/3-dependent human ventricular fibroblasts differentiation: Role of protein phosphatase activation Int J Cardiol. 2018;270: 228-236. IF=4.034
  7. Stepanov A., Karelina T., Markevich N., Demin O., Nicholas T. A mathematical model of multisite phosphorylation of tau protein. PLoS One. 2018; 13(2): e0192519. IF=2.766
  8. Федотчева Н.И., Федотчева Т.А., Теплова В.В. Активация кальций-зависимой циклоспорин-чувствительной митохондриальной поры доксорубицином в комплексе с ионами железа Биологические мембраны. 2018; 35(1): 79-84. ИФ=0,629
  9. Харечкина Е.С., Никифорова А.Б. Механизмы генерации активных форм кислорода при пермеабилизации митохондриальных мембран. Современные проблемы науки и образования, 2018, №4 ИФ=0,358
  10. Одинокова И.В., Бабурина Ю.Л., Круглов А.Г., Санталова И.М., Азарашвили Т.С., Крестинина О.В. Функционирование неспецифической поры в митохондриях сердца крыс разного возраста Биологические мембраны. 2018; 35(1): 42-51. ИФ=0,629
  11. Телешев А.Т., Горшенев В.Н., Яковлева М.А., Фомичев В.А., Фадеев Р.С., Минайчев В.В., Акатов В.С. Гидроксиапатит для замещения дефектов костной ткани. Медицинская техника. 2018. № 1 (307). С. 13-16. ИФ=0,71(РИНЦ), IF=0.16(SJR)
2017
  1. Baburina Y., Odinokova I., Azarashvili T., Akatov V., Lemasters J.J., Krestinina O. 2′,3′-Cyclic nucleotide 3′-phosphodiesterase as a messenger of protection of the mitochondrial function during melatonin treatment in aging Biochimica et Biophysica Acta Biomembranes, 2017, 1859, 94–103
  2. Крестинина О.В., Мякишева С.Н., Бабурина Ю.Л., Фадеев Р.С., Азарашвили Т.С., Акатов В.С. Влияние карбоксиамид изохинолина и мелатонина на дифференцировку клеток мышиной нейробластомы N1Е-115 (клон С-1300) и на экспрессию в них транслокаторного белка TSPO и 2’,3’-циклонуклеотид-3’-фосфодиэстеразы Нейрохимия, 2017, т34, №1, стр.41-48
  3. Крестинина О.В., Одинокова И.В., Бабурина Ю.Л., Азарашвили Т.С. Выявление белков-мишеней сигнальных протеинкиназ А и С в митохондриях мозга крыс Биологические мембраны, 2017, том 34, № 5, с. 42–47
2016
  1. Mukherjee R., Mareninova O.A., Odinokova I.V., Huang W., Murphy J., Chvanov M., Javed M.A., Wen L., Booth D.M., Cane M.C., Awais M., Gavillet B., Pruss R.M., Schaller S., Molkentin J.D., Tepikin A.V., Petersen O.H., Pandol S.J., Gukovsky I., Criddle D.N., Gukovskaya A.S., Sutton R.; and NIHR Pancreas Biomedical Research Unit. Mechanism of mitochondrial permeability transition pore induction and damage in the pancreas: inhibition prevents acute pancreatitis by protecting production of ATP. Gut, 2016, 65, 1333-1346
  2. Krishnasamy Y., Ramshesh V.K., Gooz M., Schnellmann R.G., Lemasters J.J., Zhong Z. Ethanol and High Cholesterol Diet Causes Severe Steatohepatitis and Early Liver Fibrosis in Mice. PLoS One, https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/27676640 2016, 11(9):e0163342.
  3. Maldonado E.N., DeHart D.N., Patnaik J., Klatt S.C., Gooz M.B., Lemasters J.J.  ATP/ADP Turnover and Import of Glycolytic ATP into Mitochondria in Cancer Cells Is Independent of the Adenine Nucleotide Translocator. Biol. Chem., 2016, 291(37):19642-19650
  4. Hu J., Kholmukhamedov A., Lindsey C.C., Beeson C.C., Jaeschke H., Lemasters J.J. Translocation of iron from lysosomes to mitochondria during acetaminophen-induced hepatocellular injury: Protection by starch-desferal and minocycline. Free Radic. Biol. Med., 2016, 97, 418-426.
  5. Rehman H., Liu Q., Krishnasamy Y., Shi Z., Ramshesh V.K., Haque K., Schnellmann R.G., Murphy M.P., Lemasters J.J., Rockey D.C., Zhong Z. The mitochondria-targeted antioxidant MitoQ attenuates liver fibrosis in mice. Int. J. Physiol. Pathophysiol. Pharmacol. 2016, 8(1), 14-27.
  6. Hu J., Ramshesh V.K., McGill M.R., Jaeschke H., Lemasters J.J. Low Dose Acetaminophen Induces Reversible Mitochondrial Dysfunction Associated with Transient c-Jun N-Terminal Kinase Activation in Mouse Liver. Toxicol. Sci. 2016, 150(1), 204-215.
  7. Bobylev A.G., Galzitskaya O.V., Fadeev R.S., Bobyleva L.G., Yurshenas D.A., Molochkov N.V., Dovidchenko N.V., Selivanova O.M, Penkov NV, Podlubnaya Z.A., Vikhlyantsev I.M. Smooth muscle titin forms in vitro amyloid aggregates. Bioscience Reports, 2016, 36(3), pii: e00334
  8. Xмиль Н.В., Гоpбачёва О.C., Cтpутинcкий P.Б., Коpобейникова М.О., Белоcлудцева Н.В., Мурзаева C.В., Миpонова Г.Д. Изучение влияния флокалина на дыxание и калиевый тpанcпоpт митоxондpий cеpдца и печени кpыc. Биофизика, 2016, 61(5), 884-888.
  9. Кобякова М. И., Фадеев Р. С., Соловьёва М. Е., Акатов В. С. Лекарственная устойчивость клеток острого миелоидного лейкоза в многоклеточных структурах. Роль транскрипционного фактора NF-kB Медицинский академический журнал, 2016, Т. 16, №3
  10. Сенотов А. С., Фадеева И. С., Кирсанова П. О., Фадеев Р. С., Просвирин А. А., Фесенко Н. И., Лекишвили М. В., Акатов В. С. Разработка остеопластических материалов с высоким потенциалом биоинтеграции для ускоренной регенерации костной ткани Медицинский академический журнал, 2016, Т. 16, №3
  11. Кузьмин М. В., Фадеева И. С., Горбачёв Д. П., Аббасов Т. А., Сенотов А. С., Фадеев Р. С., Фесенко Н. И., Ольхов А. А., Гурьев В. В., Акатов В. С. Оценка возможности использования нановолоконных биоимплантов на основе олигидроксибутирата для функционального восстановления ахиллова сухожилия Медицинский академический журнал, 2016, Т. 16, №3
2015
  1. Krestinina O., Azarashvili T., Baburina Y, Galvita A., Grachev D., Stricker R., Reiser G. In aging, the vulnerability of rat brain mitochondria is enhanced due to reduced level of 2',3'-cyclic nucleotide-3'-phosphodiesterase (CNP) and subsequently increased permeability transition in brain mitochondria in old animals Neurochemistry International. 2015. Т. 80, С. 41–50.
  2. Baburina Y., Azarashvili T., Grachev D., Krestinina O., Galvita A., Stricker R., Reiser G. Mitochondrial 2', 3'-cyclic nucleotide 3'-phosphodiesterase (CNP) interacts with mPTP modulators and functional complexes (I-V) coupled with release of apoptotic factors Neurochemistry International. 2015. Т. 90. С. 46-55.
  3. Azarashvili T., Krestinina O., Baburina Yu., Odinokova I., Grachev D., Papadopoulos V., Akatov V., Lemasters J.J., Reiser G. Combined effect of G3139 and TSPO ligands on Ca2+-induced permeability transition in rat brain mitochondria Archives of Biochemistry and Biophysics. 2015. Т. 587. С. 70-77.
  4. Фадеев Р.С., Соловьева М.Е., Слядовский Д.А., Захаров С.Г., Фадеева И.С., Сенотов А.С., Долгих Н.В., Голенков А.К., Акатов В.С. Клеточная агрегация повышает лекарственную устойчивость клеток острого миелоидного лейкоза. Биологические мембраны: Журнал мембранной и клеточной биологии. 2015, 32(2), C.:125-134
  5. Фадеев P.C., Cоловьева М.Е., Cлядовcкий Д.А., Заxаpов C.Г., Фадеева И.C., Cенотов А.C., Голенков А.К., Акатов В.C. Ингибиpование активации NF-kB cнижает уcтойчивоcть клеток оcтpого миелоидного лейкоза к TRAIL-индуциpованному апоптозу в многоклеточныx агpегатаx. Биофизика. 2015. Т. 60. № 6. С. 1146-1150.
2014
  1. Захаров С.Г., Голенков А.К., Митина Т.А., Луцкая Т.Д., Белоусов К.А., Фадеев Р.С., Соловьева М.Е., Сенотов А.С., Акатов В.С. Повышение лекарственной устойчивости клеток острого миелобластного лейкоза в многоклеточных агрегатах in vitro Альманах клинической медицины 2014, (31), C.:2-7
  2. Azarashvili T, Baburina Y, Grachev D, Krestinina O, Papadopoulos V, Lemasters JJ, Odinokova I, Reiser G. Carbenoxolone induces permeability transition pore opening in rat mitochondria via the translocator protein TSPO and connexin43. Arch Biochem Biophys. 2014 Sep 15;558:87-94
  3. Azarashvili T., Krestinina O., Galvita A., Grachev D., Stricker R., Reiser G., Baburina Y. IDENTIFICATION OF PHOSPHORYLATED FORM OF 2, 3-CYCLIC NUCLEOTIDE 3-PHOSPHODIESTERASE (CNPASE) AS 46 KDA PHOSPHOPROTEIN IN BRAIN NON-SYNAPTIC MITOCHONDRIA OVERLOADED BY CALCIUM Journal of Bioenergetics and Biomembranes. 2014. Т. 46. № 2. С. 135-145.
  4. Azarashvili T., Odinokova I., Krestinina O., Tyynelä J., Saris N.E.L., Bakunts A., Ternovsky V. POTENTIAL ROLE OF SUBUNIT C OF F0F1-ATPASE AND SUBUNIT C OF STORAGE BODY IN THE MITOCHONDRIAL PERMEABILITY TRANSITION. EFFECT OF THE PHOSPHORYLATION STATUS OF SUBUNIT C ON PORE OPENING Cell Calcium. 2014. Т. 55. № 2. С. 69-77.
  5. Бабурина Ю.Л., Гордеева А.Е., Мошков Д.А., Крестинина О.В., Азарашвили А.А., Одинокова И.В., Азарашвили Т.С. ВЗАИМОДЕЙСТВИЕ ОСНОВНОГО БЕЛКА МИЕЛИНА (МВР) И ФОСФОДИЭСТЕРАЗЫ 2',3'-ЦИКЛИЧЕСКИХ НУКЛЕОТИДОВ (CNPАЗЫ) С МИТОХОНДРИЯМИ Биохимия. 2014. Т. 79. № 6. С. 705-717.
  6. Крестинина О.В., Бабурина Ю.Л., Азарашвили Т.С. ДЕЙСТВИЕ МЕЛАТОНИНА НА СТРЕСС-ИНДУЦИРОВАННОЕ ОТКРЫТИЕ НЕСПЕЦИФИЧЕСКОЙ ПОРЫ В МИТОХОНДРИЯХ МОЗГА КРЫС ПРИ СТАРЕНИИ Биологические мембраны: Журнал мембранной и клеточной биологии. 2014. Т. 31. № 2. С. 95-103.